试议花青素紫薯花青素提纯及其对脂类代谢和抗氧化性影响

论文导读：
摘要：目的：紫薯花青素提取和鉴定；探讨紫薯花青素的粗提物对小鼠体内抗氧化和脂类代谢的影响以及紫薯花青素粗提物对乙酰辅酶A羧化酶基因(Acetyl-CoA Carboxylase1,ACC1)表达的调节作用。策略：(1)选用超声波提取与冻结-溶解结合法提纯紫薯花青素,利用紫外分光光度法测定其含量。(2)选取80只八周龄昆明系雄性小鼠,随机分成正常组和高脂组。其中,正常组分成4组(A/B/C/D),分别给予0、50、100、200mg/kg·bw花青素灌胃,饲喂基础日粮。高脂组也分为四组(E/F/G/H),灌胃剂量同上,饲喂高脂饲料。试验周期为30d。眼球采血分离血清后用于检测总胆固醇(TC)、甘油三酯(TG)、高密度脂蛋白(HDL)以及低密度脂蛋白(LDL)水平。采集肝脏,浅析脏器指数以及组织病理学检查,肝脏研磨液用于检测超氧化物歧化酶(SOD)、脂质氧化(MDA)以及谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-PX)。(3)体外试验,选用L02细胞系,通过RT-PCR检测矢车菊花青素对ACC1表达的调节作用。结果：(1)比较两种提纯策略,结果显示超声波提取与冻结-溶解结合法提取效果较好,并且测得紫薯花青素粗提物纯度为18.9%,含量为5mg/g干粉。(2)小鼠称重结果显示,高脂组小鼠体重下降显著(P0.05)。肝脏系数提示,正常组内,中、高组小鼠的肝脏系数显著下降(P0.05)；高脂组组间差别不显著。正常组小鼠肝脏没有显著病理变化。高脂组小鼠肝脏略微肿大,颜色偏土、偏暗,质地有韧性,易碎。病理切片显示,高脂组小鼠肝脏细胞出现了不同程度的水泡变性和脂肪变性。血清检测结果中,正常组的小鼠TC、 TG、LDL的水平出现不同程度的下降,HDL浓度升高；与空白组比较,高脂组小鼠的TC和HDL升高,TG和LDL下降。在肝脏组织研磨液中,正常组和高脂组小鼠的SOD和GSH-PX酶活性都出现升高(P0.05)。MDA的含量体现出不同程度的下降(P0.05)。(3)RT-PCR结果显示,在高脂模型细胞中,中、高剂量花青素组细胞的ACC1表达量显著低于比空白组。结论：(1)与加热法相比,超声波提取-冻结溶解结合法更有利于紫薯花青素的提取。(2)在高脂模型中,紫薯花青素减轻体重作用显著；(3)紫薯花青素抗氧化作用显著,清除自由基的能力较强GSH浓度增加),体内过氧化产物显著减少(MDA浓度降低)；体论文导读：
内脂类堆积减少,对血清中脂类的清除力增强；(4)在高脂细胞模型中,中、高浓度的花青素(2.5ug/mL、20ug/mL)能使ACC1的表达量减少,进而降低脂肪酸的合成。关键词：紫薯花青素论文提纯论文脂类代谢论文抗氧化性论文
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Abstract5-9
前言9-18
1 花青素介绍9-10
2 化学结构10-11
3 紫薯花青素提取、纯化和鉴定11-12
4 紫薯花青素的生理活性12-15

4.1 抗氧化性13

4.2 抗炎13

4.3 抗癌能力13

4.4 对脂类代谢的影响13-14

4.5 预防心血管疾病14

4.6 保护肝脏14

4.7 提升记忆力14

4.8 展望14-15

5 脂类探讨进展15-18
第一部分 紫薯花青素的提纯与鉴定18-24
1 材料与设备18

1.1 主要材料18

1.2 主要试剂18

1.3 主要仪器和设备18

2 试验策略18-20

2.1 试验材料18-19

2.2 紫薯花青素的提取19

2.3 紫薯花青素的纯化19-20

2.4 数据处理20

3 结果与浅析20-23

3.1 不同提取策略的紫薯花青素提取率20-21

3.2 最佳洗脱浓度21

3.3 矢车菊花青素的扫描光谱图21-22

3.4 紫薯花青素粗提物22-23

4 讨论23
5 小结23-24
第二部分 紫薯花青素对小鼠抗氧化性及脂类代谢的探讨24-38
1 材料24

1.1 试验材料24

1.2 主要试剂24

1.3 实验设备24

2 试验策略24-28

2.1 小鼠灌胃剂量24-25

2.2 组织切片的制作25

2.3 生化指标的检测25

2.4 样品中总蛋白的测定25

2.5 总SOD活性检测25-26

2.6 脂质氧化(MDA)检测26-27

2.7 谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)检测27-28

3 结果与浅析28-35

3.1 肝脏系数28

3.2 小鼠体重变化28-29

3.3 小鼠肝脏眼观变化29-30

3.4 小鼠组织切片30-31

3.5 小鼠血清TC、TG、HDL、LDL检测结果31-33

3.6 总SOD、MDA、GSH-PX活性检测结果33-35

4 讨论35-37
5 小结37-38
第三章 矢车菊花青素对L02细胞ACC1表达的影论文导读：PCR的凝胶电泳图42-434讨论43-445小结44-45结论和革新点45-46参考文献46-50致谢50-51个人介绍51上一页123
响38-45
1 主要材料与实验设备38-39

1.1 试验材料38

1.2 主要试剂38

1.3 主要仪器38-39

1.4 主要试剂的配制39

2 试验策略39-42

2.1 L02细胞的培养39

2.2 细胞高脂造模与RT-PCR39-42

3 试验结果42-43

3.1 RNA的凝胶电泳图42

3.2 PCR的凝胶电泳图42-43

4 讨论43-44
5 小结44-45
结论和革新点45-46
参考文献46-50
致谢50-51
个人介绍51