试谈气管兔气管黏膜上皮细胞原代培养流程

论文导读：上皮细胞原代培养模型,观察细胞在体外生长及传代的规律,为组织工程气管假体的上皮化提供技术支持。策略：一、分离培养：(1)以4月龄新西兰大耳兔取出气管(甲状软骨至气管分叉),剔除气管周围纤维结缔组织,冲洗气管至苍白并且无黏液为止。(2)剪开气管、撕取黏膜,将黏膜置于含有抗生素的PBS液中浸泡除菌。(3)将黏膜剪成约1m×1mm大
摘要：目的：目前,气管外伤、肿瘤切除等均可引起气管缺损,较为理想的治疗策略是行一期端端吻合。但当气管缺损长度超过一定的长度时,则无法进行无张力吻合,必须植入气管代替物才能重建其连续性,维持呼吸道通畅。由此,利用组织工程学的原理和技术在体外构建出具有气管主要生理功能的生物活性人工气管作为移植物修复气管缺损成为探讨热点。但是人工气管置换气管后管腔内上皮细胞的再生依赖于以宿主气管邻近部分上皮细胞的迁移,通常造成靠近吻合口区域有着完整的上皮细胞,而管腔内表面的中部没有成熟的上皮细胞覆盖。缺乏发育良好的上皮细胞层常常导致管腔狭窄和肉芽增生,影响假体移植后管腔的开放而导致失败。气管黏膜上皮细胞的培养技术是解决该难题的重要工具之一,本探讨拟建立气管黏膜上皮细胞原代培养模型,观察细胞在体外生长及传代的规律,为组织工程气管假体的上皮化提供技术支持。策略：一、分离培养：(1)以4月龄新西兰大耳兔取出气管(甲状软骨至气管分叉),剔除气管周围纤维结缔组织,冲洗气管至苍白并且无黏液为止。(2)剪开气管、撕取黏膜,将黏膜置于含有抗生素的PBS液中浸泡除菌。(3)将黏膜剪成约1m×1mm大小的小块。(4)将黏膜组织小块移入培养瓶中,置入培养箱培养。(5)对培养的细胞采取刮除法结合消化排除法纯化。二、细胞鉴定：对纯化后的细胞通过SABC法免疫组化鉴定、FITC标记的荧光抗体免疫荧光鉴定。三、传代与冻存：(1)对纯化的细胞进行传代探讨,并观察细胞在体外的生长规律。(2)对纯化后的细胞进行冻存与复苏的探讨。结果：一、细胞培养：(1)培养约5-6d可见组织块边缘少量上皮样细胞爬出。此后,组织块周围上皮样细胞覆盖面积逐渐增大,细胞呈现三角形、梭形、圆形、多角形、不规则形等。高倍镜下可见部分细胞顶面伸出纤毛,在培养液中不断摆动。10d后去除组织块,14-15d时,细胞基本长满瓶壁,有纤毛的细胞无增殖。(2)通过刮除法结合消化排除法纯化后的细胞纯度较高。二、细胞鉴定：(1)SABC法染色检测细胞中角蛋白,胞质棕,胞核淡蓝色,结果表明分离培养的细胞为上皮细胞。(2)FITC标记的荧光抗体检测细胞中的角蛋白,胞质亮绿色,可见整个细胞形态,表明分离培养的细胞为上皮细胞。三、传代与冻存：(1)细胞可以连续传代至第5代,传代后细胞贴壁及生长良好,细胞随着代数的增加细胞体积逐渐变大。传代后未见有纤毛的细胞。第2-4代细胞贴壁及生长时问无显著差别,第5代细胞贴壁数量显著减少,生长缓慢,细胞体积与前几代相比显著变大。(2)本实验复苏冻存3个月的细胞,复苏后细胞存活率、贴壁率较高。经过本策略冻存与复苏的细胞,经过体外培养,细胞活性、增殖能力仍然能够恢复到冻存前水平。结论：本实验运用组织块法成功构建出一种较为经济、便捷、可传代、可重复的兔气管黏膜上皮细胞的原代培养模型。成功对培养细胞进行鉴定、传代与冻存的探讨,为气管黏膜上皮细胞培养提供了技术可行性,为组织工程人工气管的上皮化提供论述基础与技术支持。关键词：气管论文上皮细胞论文细胞培养论文组织培养论文
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中文摘要5-7
英文摘要7-10
引言10-12
技术流程图12-13
1 材料和试剂配制13-15

1.1 材料13-14

1.2 实验用试剂配制14-15

2 兔气管黏膜上皮细胞的分离培养与纯化15-16

2.1 兔气管黏膜上皮细胞的分离培养15-16

2.2 细胞纯化16

3 气管黏膜上皮细胞鉴定16-17

3.1 免疫组化16-17

3.2 免疫劳光17

4 细胞传代与冻存17-18

4.1 细胞传代17

4.2 细胞冻存与复苏17-18

5 结果18-19

5.1 细胞培养历程18

5.2 细胞纯化及传代18-19

5.3 免疫组化19

5.4 免疫焚光19

5.5 细胞复苏19

6 讨论19-23
参考文献23-25
结论25-26
附图26-31
文献综述一31-40
参考文献36-40
文献综述二40-51
参考文献47-51
致谢51-52
攻读学位期间发表的学术论文目录52-53