试析生长率鼠尾藻生理生态学特性及组织培养技术初步生

论文导读：
摘要：本论文于2010年11月至2011年9月对青岛太平角沿岸潮间带的鼠尾藻（Sargassum thunbergii）的生理生态学特性进行了周年调查，并利用组织培养的策略对其苗种快繁技术展开了探讨性的探讨。本论文记录了鼠尾藻的形态学特点的季节变化及其与环境水温的对应联系；通过不同温度梯度和氮浓度梯度的氮吸收实验，探讨了鼠尾藻的氮收特性的季节变化规律；通过水温、光照和氮复合条件下的室内培养实验，重点探讨了温度和氮对鼠尾藻的生长和成熟的影响；利用鼠尾藻的假根再生不定芽的策略获得苗种，并于室内培养成新的个体直至出现。1、鼠尾藻的形态学特点的季节变化及其与环境水温的对应联系2010年11月至2011年3月，随着环境水温由14℃下降至3℃，鼠尾藻的平均主枝长度维持在3cm左右，季节变化微弱。2011年3月至7月，随着水温由3℃上升至20.5℃，藻体的平均主枝长度迅速增加，并于3月开始形成气囊，5月出现侧枝，7月观察到生殖托，7月藻体的平均主枝长度达到全年最大值26.62±13.45cm的同时，平均每个主枝上的侧枝的数量（33.18±24.53个）、具气囊的主枝比例（69.47±29.24%）和具生殖托的主枝比例（70.38±27.90%）均达到全年最大值。2011年7月至9月，随着水温由20.5℃升至24℃，藻体的平均主枝长度迅速减少至3.35±0.73cm，侧枝和气囊消失，具生殖托的主枝比例减少至8.72±0.36%。根据上面陈述的形态学特点的周年调查结果，青岛太平角沿岸潮间带的鼠尾藻的年生活周期大致可以分为四个阶段：休止期（11-3月）、生长盛期-成熟期（3-7月）、成熟期-衰败期（7-9月）、发芽期（9-11月）。2、鼠尾藻的氮吸收特性的季节变动重点探讨了两个环境因子——温度和氮浓度影响下鼠尾藻对NO_3~--N和NH_4~+-N的吸收速率的季节变化。实验分别设置了5-6个温度梯度(10、15、20、24、30、35℃)和5个氮浓度梯度（1/4PESI、1/8PESI、1/16PESI、1/32PESI、灭菌海水），并分别针对2个生长阶段（成体和幼孢子体）的藻体进行了实验。实验结果表明，鼠尾藻成体对NO_3~--N的吸收速率呈现出显著的温度变化和季节变化。NO_3~--N吸收速率11月均低于20μg/g·w/h，1-5月增至20-60μg/g·w/h；7月回降至20μg/g·w/h以下，9月进一步降至5μg/g·w/h以下。而NH_4~+-N吸收速率全年均维持在20μg/g·w/h左右，没有显著的季节变化。在10-30℃范围内，鼠尾藻成体均可吸收NO_3~--N和NH_4~+-N，而NO_3~--N和NH_4~+-N最大吸收速率所对应的温度则呈现出较小的季节浮动，11月、3月和9月为20℃，5月和7月为20℃-24℃。1-5月鼠尾藻成体对NO_3~--N的吸收速率大于对NH_4~+-N的吸收速率。鼠尾藻成体对NO_3~--N的吸收速率的呈现出显著的氮浓度变化和季节变化。11-1月NO_3~--N的吸收速率在1692-3110μg/L浓度下达到饱和，最大吸收速率低于35μg/g·w/h；3-5月NO_3~--N的吸收速率即使在3582-4500μg/L浓度下仍未饱和，最大吸收速率增至60-70μg/g·w/h；7-9月NO_3~--N的吸收速率在851-1419μg/L浓度下达到饱和，最大吸收速率降至35μg/g·w/h以下。而NH_4~+-N的吸收速率曲线全年呈现开放型方式，但最大吸收速率均在20μg/g·w/h以下。5-7月随着氮浓度的增加，鼠尾藻成体对NO_3~--N的吸收速率大于对NH_4~+-N的吸收速率。温度和氮浓度对鼠尾藻幼孢子体的氮吸收速率有显著影响。NO_3~--N和NH_4~+-N吸收速率在10-30℃范围内没有显著差别，但在35℃显著降低。NO_3~--N和NH_4~+-N最大吸收速率所对应的温度分别为15℃和20℃。幼孢子体的氮浓度-氮吸收速率曲线呈现饱和型方式，NO_3~--N和NH_4~+-N的吸收速率分别在365μg/L和1377μg/L浓度下达到饱和。3、温度和氮对鼠尾藻生长的影响生长实验设置了5个温度梯度（5、10、15、20、24、30或35℃）、2种培养液（富氮的1/4PESI培养液和缺氮的A论文导读：
SS_2培养液），并分别针对2个生长阶段（成体和幼孢子体）的藻体进行了实验。实验结果表明，温度和氮对成体的特定生长率（SGR）具有显著影响，并呈现显著的季节变化。鼠尾藻成体的湿重和长度的特定生长率呈现出显著的季节变化。对于湿重，11-1月SGR均低于4%/d，3-7月SGR增至3-12%/d，9月SGR降至4%/d以下。对于长度，11-1月SGR均低于7%/d，3-5月SGR增至2-13%/d，7-9月SGR降至4%/d以下。富氮和缺氮条件对SGR的影响呈现出季节性，3-7月富氮组的湿重SGR显著大于缺氮组，3-5月富氮组的长度SGR显著大于缺氮组，而其他月份富氮组和缺氮组的SGR没有显著差别。生长最适温度呈现季节浮动，5-9月富氮组的最适生长温度比缺氮组高出5-10℃，说明氮的有无对于藻体对抗高温具有推动作用。温度和氮浓度对幼孢子体的SGR也具有显著影响。无论富氮组还是缺氮组，幼孢子体在15-30℃范围内SGR差别不显著，而在35℃下均显著降低。除20℃外的其他温度下，富氮组的SGR显著高于缺氮组的SGR。4、鼠尾藻的组织培养技术利用假根再生不定芽策略获得苗种，并通过室内培养观察记录了不定芽发育成新的个体的历程。主要比较了3个温度梯度（15、20、24℃）和3种培养液（PESI、去除氮磷的ASS_2、灭菌过滤海水）对不定芽形成的影响。结果表明，灭菌过滤海水效果最好，不定芽形成率达60-80%，每个组织快上可形成3-6个不定芽；其次是去除氮磷的ASS_2培养液，不定芽的形成率可达60-75%，每个组织块上可形成2-5个不定芽，远高于富含氮磷的PESI组。20℃是假根再生不定芽的最适温度。不定芽经离体培养可生长成为正常植株，并形成生殖托。关键词：鼠尾藻论文温度论文氮论文氮吸收速率论文特定生长率论文组织培养论文
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Abstract8-15
0 前言15-16
1 文献综述16-24

1.1 鼠尾藻的生态学调查16-17

1.2 鼠尾藻的营养吸收动力学的探讨进展17-20

1.2.1 物理因子对大型海藻营养盐吸收的影响17

1.2.2 营养盐因子对大型海藻营养盐吸收的影响17-18

1.2.3 大型海藻的营养盐吸收方式18-19

1.2.4 不同生长阶段大型海藻的营养盐吸收19

1.2.5 大型海藻的营养盐吸收的时间依赖性19-20

1.2.6 环境因子对鼠尾藻的营养盐吸收的影响20

1.3 环境因子对鼠尾藻生长的影响的探讨进展20-22

1.3.1 物理因子对大型海藻生长的影响20-21

1.3.2 氮对大型海藻生长的影响21

1.3.3 环境因子对鼠尾藻生长的影响21-22

1.4 鼠尾藻的组织培养技术的探讨进展22-24

2 鼠尾藻形态特点的季节变化24-34

2.1 前言24

2.2 材料与策略24

2.1 采集时间和地点24

2.2 鼠尾藻的形态学特点的观测24

2.3 实验结果24-25

2.3.1 水温的季节变化24-25

2.3.2 鼠尾藻的形态学特点的季节变化25

2.4 讨论25-34

3 鼠尾藻的氮吸收特性的季节变动34-45

3.1 前言34

3.2 材料与策略34-36

3.

2.1 实验材料的获得34-35

3.

2.2 实验设计35

3.

2.1 温度对鼠尾藻氮吸收速率的影响35

3.

2.2 氮浓度对鼠尾藻氮吸收速率的影响35

3.

2.3 数据处理与浅析35-36

3.3 结果36-37

3.1 温度影响下鼠尾藻氮吸收的季节变动36

3.2 氮浓度影响下鼠尾藻氮吸收的季节变动36-37

3.4 讨论37-45

4 温度和氮对鼠尾藻生长的影响45-62

4.1 前言45

4.2 材料与策略45-47

4.

2.1 实验材料45

4.

2.2 实验设计45-46

4.

2.3 叶绿素含量的测定46

4.

2.4 数据处理与浅析46-47

4.3 结果47-49
4.

3.1 温度和氮对鼠尾藻成体生长的影响47

4.

3.2 温度和氮对鼠尾藻幼孢子体生长的影响47-48

4.

3.3 温度和氮对鼠尾藻叶绿素含量的影响48-49

4.4 讨论49-62
4.4.1 温度和氮对鼠尾藻生长的论文导读：气培养635.3结果63-655.3.1不同培养条件下不定芽的形成情况63-655.3.2不同培养条件下不定芽的生长情况655.4讨论65-72参考文献72-80致谢80-81个人介绍81硕士期间发表文章81上一页123
影响49-51

4.2 温度和氮对鼠尾藻叶绿素含量的影响51-62

5 鼠尾藻的组织培养技术62-72

5.1 前言62

5.2 材料与策略62-63

5.

2.1 外植体的获得和处理62-63

5.

2.2 不定芽的诱导培养63

5.

2.3 不定芽的离体充气培养63

5.3 结果63-65
5.

3.1 不同培养条件下不定芽的形成情况63-65

5.

3.2 不同培养条件下不定芽的生长情况65

5.4 讨论65-72
参考文献72-80
致谢80-81
个人介绍81
硕士期间发表文章81